細胞感染有以下三種
：
（一）細胞準備
將狀態良好的目的細胞接種到24孔板
，使細胞濃度為 1×105/ml 細胞
，接種細胞數量因細胞的生長速度而略有不同
， 一般是保證第二天進行病毒感染的時候細胞匯合率介於 50%至70%之間
。
（二）病毒感染
1.感染細胞MOI 的測定MOI（Multiplicity of Infection
，感染複數）是指每個細胞感染的病毒數
，通常MOI 越高
，病毒整合到染色體的數量以及目的蛋白的表達量越高
。對於分裂活躍的細胞
，比如 Hela
、293 細胞
，MOI=1～3 時
，80%以上的細胞均表達目的基因
。而對於非分裂細胞
，比如原代細胞
，感染效率較低
。需要進行MOI梯度摸索實驗
，選擇適合的MOI 進行實驗。
2.感染步驟
按實驗需要將細胞鋪板（比如12孔板）
；細胞數以第2天密度約50%為宜
；37℃ 培養過夜
。
對於Polybrene 可施加的細胞
：準備*培養基和 Polybrene混合物
，Polybrene 終濃度為摸索得到的zui適終濃度
。移去培養基並添加 0.5 ml Polybrene/培養基混合物於每孔中（適用於24 孔板，其他孔板請相應調整體）
。
對於不適用 Polybrene 的細胞
，以上步驟省略
，直接進入下麵步驟
：
感染前
，從冰箱取出並在 37℃水浴中快速融化病毒
，吸去細胞原有培養基
，將病毒原液加入細胞中
，輕輕8字混勻
。感染後第二天（約12小時）
，吸去含病毒的培養液
，換上新鮮的*培養液
，繼續37℃培養
。感染後48小時
，對於帶 GFP報告基因的病毒
，可通過熒光顯微鏡觀測GFP表達效率
，對於攜帶 Puromycin抗性基因的病毒
，換上含適當濃度的 Puromycin 的新鮮*培養液
，篩選穩定轉導的細胞株
。